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        ELISA實驗總是遇到這些問題,怎么辦呀?

        更新時間:2025-09-05  |  點擊率:597

          

          ELISA實驗全流程問題排查手冊

          我們將問題分為三大類:① 信號問題、② 背景問題、③ 標準曲線/數據問題。

          一、 信號問題

          1. 無信號或信號太弱

          可能原因及解決方案:

          試劑問題:

          抗體失活或錯加漏加: 確認一抗、二抗或檢測抗體(間接法)是否有效。檢查抗體保質期,并確保添加了正確的抗體。每次實驗前,短暫離心抗體管,確保試劑全部集中在管底。

          酶失活: 檢查HRP等酶標記物是否因保存不當(如反復凍融、接觸疊氮鈉)而失活。

          底物失效: TMB底物應無色透明,若已變藍則說明失效。需避光保存,現用現配。

          樣本問題:

          目標蛋白濃度過低: 樣本中待測物含量低于檢測下限。可嘗試濃縮樣本或換用更高靈敏度的ELISA試劑盒。

          樣本保存不當: 反復凍融或長期保存于-20℃(而非-80℃)可能導致蛋白降解。確保樣本分裝保存,避免反復凍融。

          樣本基質干擾: 血清、血漿中的干擾物質(如溶血、脂血)可能影響。可適當稀釋樣本或對樣本進行預處理(如高速離心去除沉淀)。

          操作問題:

          孵育時間/溫度不足: 嚴格遵循說明書推薦的孵育時間和溫度(通常是37℃ 1小時或4℃過夜)。

          洗板過于劇烈: 洗板次數過多或沖力過猛,將包埋的抗原或結合的抗體洗脫。遵循說明書的洗滌次數和程序,保持洗板機噴嘴通暢,手工洗板時動作要輕柔。

          封板膜不嚴: 孵育時蒸發導致邊緣孔變干,有效濃度升高,而中心孔濃度正常,出現“邊緣效應"。確保使用高質量的封板膜,并密封孔板。

          移液誤差: 定期校準移液器,確保加樣體積準確。吸取粘稠液體(如血清)時最好使用反向吸液法。

          2. 信號過強(超出標準曲線最高點)

          可能原因及解決方案:

          樣本濃度過高: 這是最常見的原因。必須對樣本進行預實驗摸索稀釋倍數! 找到一個使OD值落在標準曲線中段的稀釋度。

          孵育時間過長或溫度過高: 嚴格計時,避免過度孵育。

          酶標二抗濃度過高: 如果是自己組建的ELISA體系,需滴定優化二抗濃度。

          底物顯色時間過長: TMB顯色反應需及時終止(加終止液)。一旦標準曲線最高點顏色足夠深,應立即終止。

          二、 背景問題

          現象: 陰性對照、空白孔也有較高的吸光度值。

          可能原因及解決方案:

          洗滌不充分: 這是高背景的首要元兇!確保洗滌緩沖液配制正確(如鹽離子濃度),洗滌次數和體積要足夠,每次洗滌后都要在吸水紙上拍干殘留液體。

          封閉不凈:

          更換封閉劑(常用BSA、脫脂奶粉、血清等),找到適合您體系的封閉液。

          增加封閉液濃度或延長封閉時間。

          非特異性結合:

          抗體交叉反應: 確保使用的一抗和二抗特異性好,且種屬匹配。例如,檢測小鼠樣本,二抗應為抗小鼠的,且一抗不能來源于小鼠。

          抗體濃度過高: 滴定優化一抗和二抗的工作濃度。

          試劑污染: 所有試劑和容器都要確保干凈,避免交叉污染。

          底物顯色時間過長: 同“信號過強"原因。

          酶標板問題: 使用了非ELISA專用的極板,吸附能力不均一。

          三、 標準曲線與數據問題

          1. 標準曲線不佳(線性差/R2值低)

          標準品問題:

          標準品復溶不當:未溶解或混勻不充分。復溶前先離心,加入稀釋液后輕柔地吹打或渦旋混勻,避免起泡。

          標準品反復凍融:必須分裝保存,每支只用一次。

          稀釋錯誤:進行倍比稀釋時,每步都要換新槍頭,并充分混勻。

          移液誤差: 標準曲線的準確性極度依賴精確的移液。務必使用校準過的移液器和高質量的槍頭。

          孵育時間不一致: 標準品孔和樣本孔應同時加樣、孵育和顯色,以保證反應條件一致。

          2. 重復性差(孔間差異大)

          操作不一致: 不同操作者或同一次實驗的不同時間點,手法不一致。盡量由同一人完成全部操作。

          洗板不均: 洗板機堵塞導致某些孔洗滌不充分/過于劇烈。每次實驗前檢查洗板機所有通道是否通暢。

          移液誤差: 同上,確保加樣精確。

          板底不潔: 讀板前,用無塵紙仔細擦拭板底,去除指紋、水漬或灰塵。

          通用黃金法則與建議

          尊重說明書: 實驗時,嚴格遵循試劑盒說明書的每一步,不要隨意更改流程、時間和溫度。

          設立對照: 每一次實驗都必須包含:

          空白孔: 只有底物和終止液,用于調零。

          陰性對照:不含目標蛋白的樣本基質,用于評估背景。

          陽性對照 :已知濃度的標準品或樣本,用于驗證實驗有效性。

          精心準備:

          提前規劃: 將所有試劑從冰箱取出,平衡至室溫(除非說明書要求低溫操作),減少溫度帶來的誤差。

          充分混勻: 所有液體試劑使用前都輕輕搖勻。

          “預實驗"摸索: 對于未知濃度的樣本,一定要做梯度稀釋預實驗,找到合適的稀釋倍數。

          做好記錄: 詳細記錄每一批試劑的批號、實驗日期、操作人員、任何與說明書不一致的細節等,便于出了問題追溯原因。

          總結一下,當您遇到問題時,可以按照以下步驟排查:

          回顧實驗記錄,確認操作無誤。

          檢查試劑:是否在效期內?是否正確保存?是否漏加?

          重點檢查洗滌和孵育步驟,這兩個是問題的重災區。

          分析標準曲線:如果標準曲線很好,問題很可能出在樣本;如果標準曲線也很差,問題則出在公共環節(如試劑、操作、洗板等)。

          注:以上僅供參考,不作為實際數據,實驗需嚴格遵循說明或咨詢技術老師。 Elisa試劑盒

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